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58014
Phospho-ATR (Thr1989) Antibody

Phospho-ATR (Thr1989) Antibody #58014

应用

反应性 敏感性 MW (kDa) 来源
H 内源性 300
蛋白质印迹法

对未经处理 (-) 或已经 MitomycinC (MMC) (2 μg/mL,24小时; +) 处理的 HeLa 细胞提取物进行蛋白质印迹分析。MMC 处理前 1 小时,加入 ATR 抑制剂 VE-821 (10μM; +) 和/或 ATM 抑制剂 KU55933 (10μM,+) 。使用 Phospho-ATR (Thr1989) Antibody (上图) 或 ATR (E1S3S) Rabbit mAb13934(下图) 进行蛋白质印迹分析。

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蛋白质印迹法

对于 WT 或 T1989A 突变体人 ATR 中编码 Myc/DDK 标记碎片的表达质粒,对经其转染的 293T 细胞提取物进行蛋白质印迹分析。使用 Phospho-ATR (Thr1989) Antibody (上图) 或 Myc-Tag (71D10) Rabbit mAb #2278(下图) 进行蛋白质印迹分析。

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蛋白质印迹法实验步骤

蛋白质印迹法就是将膜与 5% w/v 脱脂奶粉、 1X TBS 以及 0.1% Tween® 20 中的稀释的一抗在 4°C 下进行夜间孵育,同时轻轻晃动。

注意:请参阅一抗说明书或产品网页了解建议使用的抗体稀释度。

A. 溶液和试剂

注意:使用反渗透去离子水 (RODI) 或同等级别的水制备溶液。

  1. 20X 磷酸盐缓冲液 (PBS):(#9808) 要制备 1 L 1X PBS:加入 50 ml 20X PBS 至 950 ml dH2O 并混合。
  2. 10 X Tris 盐缓冲液 (TBS):(#12498) 要制备 1 L 1X TBS:加入 100 ml 10X 至 900 ml dH2O 并混合。
  3. 1X SDS 上样缓冲液:Blue Loading Pack (#7722) 或Red Loading Pack (#7723) 通过添加 1/10 体积的 30X DTT 至 1 体积的 3X SDS 上样缓冲液,以制备新鲜的 3X 还原性上样缓冲液。用 dH2O 将其稀释至 1X。
  4. 10X Tris-Glycine SDS 电泳缓冲液:(#4050) 要制备 1 L 1X 电泳缓冲液:添加 100 ml 10X 电泳缓冲液至 900 ml dH2O 中并混合。
  5. 10X Tris-Glycine 转移缓冲液:(#12539) 要制备 1 L 1X 转移缓冲液:将 100 ml 10X 转移缓冲液添加至 200 ml 甲醇 + 700 ml dH2O 中,并混合。
  6. 含有 Tween® 20 (TBST) 的 10 X Tris 盐缓冲液:(#9997) 要制备 1 L 1X TBST: 将 100 ml 10X TBST 添加至 900 ml dH2O 中并混合。
  7. 脱脂奶粉:(#9999)。
  8. 封闭缓冲液:含 5% w/v 脱脂奶粉的 1X TBST;要制备 150 ml,将 7.5 g 脱脂奶粉添加至 150 ml 1X TBST 中并充分混匀。
  9. 洗涤缓冲液: (#9997) 1X TBST。
  10. 一抗稀释缓冲液:含 5% 脱脂奶粉 的 1X TBST;要制备 20 ml,将 1.0 g 脱脂奶粉添加至 20 ml 1X TBST 中并充分混匀。
  11. Biotinylated Protein Ladder Detection Pack:(#7727)。
  12. Prestained Protein Marker, Broad Range (11-190 kDa):(#13953)。
  13. 印迹膜和纸:(#12369) 本实验步骤针对硝酸纤维素膜进行了优化。通常推荐 0.2 µm 孔径。
  14. HRP 偶联二抗:Anti-mouse IgG、HRP-linked Antibody (#7074)。
  15. 检测试剂:SignalFire™ ECL Reagent (#6883)。

B. 蛋白质印迹

制备样品的常规流程。

  1. 添加含有调节因子的新鲜培养基,使其对细胞进行处理一段时间。
  2. 从培养物中吸出培养基;用 1X PBS 洗涤细胞;吸出。
  3. 加入 1X SDS 样品缓冲液裂解细胞(6 孔板每孔加 100 µl 或直径为 10 cm 盘中加 500 µl)。立即从板上刮下细胞并将提取物转移至微量离心管。置于冰上。
  4. 超声处理 10–15 秒以完成细胞裂解并剪切 DNA(以降低样品粘度)。
  5. 取 20 µl 样品,在 95–100°C 下加热 5 分钟;放在冰上冷却。
  6. 微量离心机内离心 5 分钟。
  7. 取 20 µl 上样到 SDS-PAGE 凝胶 (10 cm x 10 cm) 上。

    注意:建议将预染蛋白分子量标准品(#13953,10 µl/泳道)上样以验证电转移与生物素化蛋白质标准品(#7727,10 µl/泳道)以确定分子量。

  8. 电转至硝酸纤维素膜 (#12369)。

C. 膜封闭和抗体孵育

注意:以下体积数适用于 10 cm x 10 cm (100 cm2) 的膜;对于不同尺寸的膜,可相应调整体积。

I. 膜封闭

  1. (可选)转移之后,在室温下用 25 ml TBS 将硝酸纤维素膜洗涤 5 分钟。
  2. 将膜置于 25 ml 封闭缓冲液中,在室温下孵育 1 小时。
  3. 用 15ml TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。

II.一抗孵育

  1. 将膜和一抗(按照产品说明书中建议的适当稀释度和稀释液)置于 10 ml 一抗稀释缓冲液中在 4°C 下孵育过夜并不时轻轻晃动。
  2. 用 15ml TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
  3. 将膜与 Anti-rabbit IgG, HRP-linked Antibody (#7074,按 1:2000 的比例)和 Anti-biotin, HRP-linked Antibody (#7075,按 1:1000–1:3000 的比例)一起孵育,并且轻轻晃动且在室温下孵育 1 小时后,再检测 10 ml 封闭缓冲液中的生物素化蛋白标记物。
  4. 用 15ml TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
  5. 继续进行检测(D 部分)。

D. 蛋白质检测

使用说明:

  1. 在 TBST 中清洗与膜结合的 HRP (Antibody Conjugate) 三次,持续 5 分钟。
  2. 通过稀释一部分 2X 试剂 A 和一部分 2X 试剂 B(例如:要制备 10 ml,则添加 5 ml 试剂 A 和 5 ml 试剂 B),来制备 1X SignalFire™ ECL Reagent (#6883)。混匀。
  3. 将底物与膜一起孵育 1 分钟,倒掉多余溶液(膜将保持湿润),然后包裹在塑料中并在 X 线胶片下曝光。

* 避免反复接触皮肤。

发布​于 2005 年 6 月 

修订于 2013 年 11 月

蛋白质印迹法再标记实验步骤

在样品数量有限时,在现有的膜上反复单独检测多种蛋白进行免疫印迹分析来说是一种非常方便的方法。应注意的是,为了获得最好的结果,始终建议您进行新的印记实验以进行分析。重新检测是一种比较有效的方法,但在每一次重新检测印迹时,背景信号可能会增强。此外,建议您在进行重新检测前确认一抗复合体已被清除,以便与新抗体结合而产生的信号不是第一次免疫印迹实验的残余信号。这可通过再次将印迹暴露于 ECL 试剂并确保在添加下一个一抗前无信号来确认。

A. 溶液和试剂

注意:用反渗透去离子 (RODI) 水或等效净化水制备溶液。

  1. 洗涤缓冲液: Tris Buffered Saline with Tween® 20 (TBST-10X) (#9997)
  2. 洗脱缓冲液:要制备 100 ml,可将 1M Tris-HCl pH 6.8 的 6.25 ml 、20% SDS 的 10 ml 和 700 μl β-巯基乙醇混合。使用去离子化 H20 补足至 100 ml。仅在使用前制备新鲜的缓冲液。

B. 实验步骤

  1. 胶片下曝光后,将膜置于 TBST 中清洗四次,每次 5 分钟。在膜未干燥的情况下才可获得最佳结果。
  2. 在 50°C 下,在膜再生液中将膜孵育 30 分钟,同时轻轻晃动。
  3. 在 TBST 中将膜清洗六次,每次 5 分钟。
  4. (可选)为了确保已清除原始信号,用 5 ml TBST 将膜清洗两次,每次 10 分钟。将膜与 LumiGLO® 在室温下孵育 1 分钟,同时轻轻搅动。将膜上多余的显影液沥干。切勿令膜干燥。包在塑料包裹膜中并曝光于 X 射线胶片。
  5. 再次在 TBST 中将膜清洗四次,每次 5 分钟。
  6. 膜现在可以再次使用了。根据免疫印迹分析实验步骤中的“膜封闭和抗体孵育”步骤开始检测。

发布​于 2005 年 6 月 

修订于 2016 年 6 月

实验步骤编号:263

应用 稀释度
蛋白质印迹法 1:1000
存储:

保存在 10mM sodium HEPES (pH 为 7.5)、150 mM NaCl、100 µg/ml BSA 和 50 % 甘油中。存储温度为 -20℃。请不要分装抗体。

Phospho-ATR (Thr1989) Antibody 仅当 Thr1989 磷酸化后可识别内源水平的 ATR 蛋白。

物种反应性:

使用与人 ATR 蛋白的 Thr1989 周围残基相对应的合成肽,对动物进行免疫接种来产生多克隆抗体。使用蛋白质 A 和肽亲和色谱对抗体进行纯化。

毛细血管扩张性共济失调突变激酶 (ATM) 和毛细血管扩张性共济失调 Rad3 相关激酶 (ATR) 属于 PI3 激酶相关激酶 (PIKK) 的家族成员,PIKK 可对后接一个谷氨酰胺的丝氨酸或苏氨酸残基上多个底物进行磷酸化,作为对 DNA 损伤或复制受阻的反应 (1-3)。ATR 在细胞周期信号转导和 DNA 修复过程中发挥重要作用,但除此之外,对于其活性我们了解的很少。ATR 一直以来被认为是在细胞持续激活的状态下出现,并且通过募集 ATR 至单链 DNA 和复制应激位点来促使发生由 DNA 损伤诱发的信号转导。Serine 位点的 ATR 磷酸化 428 是对紫外线诱导的 DNA 损伤的反应, 同时也被认为是激活 ATR 的一种方式 (4,5)。最近的研究显示 ATR 在苏氨酸位点出现自磷酸化1989。与 ATM Ser1981 相似, ATR Thr1989 位点发生磷酸化是对 DNA 损伤的反应,这也表明该位点的磷酸化在 ATR 介导的信号转导中有重要作用 (6,7)。

  1. Kastan, M.B. and Lim, D.S. (2000) Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 1, 179-186.
  2. Abraham, R.T. (2004) DNA Repair (Amst) 3, 883-7.
  3. Shechter, D. et al. (2004) DNA Repair (Amst) 3, 901-8.
  4. Vauzour, D. et al. (2007) Arch Biochem Biophys 468, 159-66.
  5. Smith, J. et al. (2010) Adv Cancer Res 108, 73-112.
  6. Nam, E.A. et al. (2011) J Biol Chem 286, 28707-14.
  7. Liu, S. et al. (2011) Mol Cell 43, 192-202.
Entrez-Gene Id
545
Swiss-Prot Acc.
Q13535
仅供研究使用。不得用于诊断流程。

Cell Signaling Technology 是 Cell Signaling Technology, Inc. 的商标。
XP 是 Cell Signaling Technology, Inc. 的注册商标。
Tween 是 ICI Americas, Inc. 的注册商标。

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