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12697S 100 µl(10 次蛋白质印迹)

中国分公司 (PRC)

赛信通(上海)生物试剂有限公司

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反应性 敏感性 MW (kDa) 同型
H M R Mk 内源性 51 兔 IgG

蛋白质印迹法

使用 β-Arrestin 1 (D8O3J) Rabbit mAb 对来自 MDA-MB-435 细胞、Hep G2 细胞和 PANC-1 细胞的提取物进行蛋白质印迹分析。

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蛋白质印迹法

使用 β-Arrestin 1 (D8O3J) Rabbit mAb(上)和 β-Actin (D6A8) Rabbit mAb #8457(下)对来自 A549 细胞(赋形剂处理 (-) 或用地塞米松处理(100 nM,24 小时;+))的提取物进行蛋白质印迹分析。

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免疫沉淀

使用 Rabbit (DA1E) mAb IgG XP® Isotype Control #3900(泳道 2)或 β-Arrestin 1 (D8O3J) Rabbit mAb (泳道 3),对来自 LN18 细胞提取物的 β-抑制蛋白 1 进行免疫沉淀 。泳道 1 是 10% 输入对照。使用 β-Arrestin 1 (D8O3J) Rabbit mAb 进行蛋白质印迹分析。

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实验步骤

蛋白质印迹法实验步骤

要进行蛋白质印迹法分析,在 4°C 下,将膜与稀释的一抗放在 5% w/v BSA、1X TBS、0.1% Tween® 20 中一起孵育,轻晃孵育一整夜。

注意:请参阅一抗说明书或产品网页了解建议使用的抗体稀释度。

A. 溶液和试剂

从样品制备至检测,蛋白质印迹法需要用到的试剂在一个便利的试剂盒中提供:#12957 Western Blotting Application Solutions Kit

注意:使用反渗透去离子水 (RODI) 或同等级别的水制备溶液。

  1. 20X 磷酸盐缓冲液 (PBS):(#9808) 要制备 1 L 1X PBS:加入 50 ml 20X PBS 至 950 ml dH2O 并混合。
  2. 10 X Tris 盐缓冲液 (TBS):(#12498) 要制备 1 L 1X TBS:加入 100 ml 10X 至 900 ml dH2O 并混合。
  3. 1X SDS 上样缓冲液:Blue Loading Pack (#7722) 或Red Loading Pack (#7723) 通过添加 1/10 体积的 30X DTT 至 1 体积的 3X SDS 上样缓冲液,以制备新鲜的 3X 还原性上样缓冲液。用 dH2O 将其稀释至 1X。
  4. 10X Tris-Glycine SDS 电泳缓冲液:(#4050) 要制备 1 L 1X 电泳缓冲液:添加 100 ml 10X 电泳缓冲液至 900 ml dH2O 中并混合。
  5. 10X Tris-Glycine 转移缓冲液:(#12539) 要制备 1 L 1X 转移缓冲液:将 100 ml 10X 转移缓冲液添加至 200 ml 甲醇 + 700 ml dH2O 中,并混合。
  6. 含有 Tween® 20 (TBST) 的 10 X Tris 盐缓冲液:(#9997) 要制备 1 L 1X TBST: 将 100 ml 10X TBST 添加至 900 ml dH2O 中并混合。
  7. 脱脂奶粉:(#9999)。
  8. 封闭缓冲液:含 5% w/v 脱脂奶粉的 1X TBST;要制备 150 ml,将 7.5 g 脱脂奶粉添加至 150 ml 1X TBST 中并充分混匀。
  9. 洗涤缓冲液: (#9997) 1X TBST。
  10. 牛血清白蛋白 (BSA): (#9998)。
  11. 一抗稀释缓冲液:含 5% BSA 的 1X TBST;要制备 20 ml,添加 1.0 g BSA 至 20 ml 1X TBST,然后充分混匀。
  12. Biotinylated Protein Ladder Detection Pack:(#7727)。
  13. Prestained Protein Marker, Broad Range (11-190 kDa):(#13953)。
  14. 印迹膜和纸:(#12369) 本实验步骤针对硝酸纤维素膜进行了优化。通常推荐 0.2 µm 孔径。
  15. HRP 偶联二抗:Anti-mouse IgG、HRP-linked Antibody (#7074)。
  16. 检测试剂:SignalFire™ ECL Reagent (#6883)。

B. 蛋白质印迹

制备样品的常规流程。

  1. 添加含有调节因子的新鲜培养基,使其对细胞进行处理一段时间。
  2. 从培养物中吸出培养基;用 1X PBS 洗涤细胞;吸出。
  3. 加入 1X SDS 样品缓冲液裂解细胞(6 孔板每孔加 100 µl 或直径为 10 cm 盘中加 500 µl)。立即从板上刮下细胞并将提取物转移至微量离心管。置于冰上。
  4. 超声处理 10–15 秒以完成细胞裂解并剪切 DNA(以降低样品粘度)。
  5. 取 20 µl 样品,在 95–100°C 下加热 5 分钟;放在冰上冷却。
  6. 微量离心机内离心 5 分钟。
  7. 取 20 µl 上样到 SDS-PAGE 凝胶 (10 cm x 10 cm) 上。

    注意:建议将预染蛋白分子量标准品(#13953,5 µl/泳道)上样以验证电转移与生物素化蛋白质标准品(#7727,10 µl/泳道)以确定分子量。

  8. 电转至硝酸纤维素膜 (#12369)。

C. 膜封闭和抗体孵育

注意:以下体积数适用于 10 cm x 10 cm (100 cm2) 的膜;对于不同尺寸的膜,可相应调整体积。

I. 膜封闭

  1. (可选)转移之后,在室温下用 25 ml TBS 将硝酸纤维素膜洗涤 5 分钟。
  2. 将膜置于 25 ml 封闭缓冲液中,在室温下孵育 1 小时。
  3. 用 15ml TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。

II.一抗孵育

  1. 将膜和一抗(按照产品说明书中建议的适当稀释度和稀释液)置于 10 ml 一抗稀释缓冲液中在 4°C 下孵育过夜并不时轻轻晃动。
  2. 用 15ml TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
  3. 使用 10 ml 封闭缓冲液稀释 Anti-rabbit IgG, HRP-linked Antibody (#7074,按 1:2000 的比例)和 anti-biotin, HRP-linked Antibody (#7075,按 1:1000–1:3000 的比例)用以检测生物素化蛋白标准品。将膜与稀释液一起孵育,在室温下轻轻摇晃孵育 1 小时。
  4. 用 15ml TBST 洗涤三次,每次 5 分钟。
  5. 继续进行检测(D 部分)。

D. 蛋白质检测

使用说明:

  1. 在 TBST 中清洗与膜结合的 HRP (Antibody Conjugate) 三次,持续 5 分钟。
  2. 通过稀释一部分 2X 试剂 A 和一部分 2X 试剂 B(例如:要制备 10 ml,则添加 5 ml 试剂 A 和 5 ml 试剂 B),来制备 1X SignalFire™ ECL Reagent (#6883)。混匀。
  3. 将底物与膜一起孵育 1 分钟,倒掉多余溶液(膜将保持湿润),然后包裹在塑料中并在 X 线胶片下曝光。

* 避免反复接触皮肤。

发布​于 2005 年 6 月 

修订于 2013 年 11 月

蛋白质印迹法再标记实验步骤

在样品数量有限时,在现有的膜上反复单独检测多种蛋白进行免疫印迹分析来说是一种非常方便的方法。应注意的是,为了获得最好的结果,始终建议您进行新的印记实验以进行分析。重新检测是一种比较有效的方法,但在每一次重新检测印迹时,背景信号可能会增强。此外,建议您在进行重新检测前确认一抗复合体已被清除,以便与新抗体结合而产生的信号不是第一次免疫印迹实验的残余信号。这可通过再次将印迹暴露于 ECL 试剂并确保在添加下一个一抗前无信号来确认。

A. 溶液和试剂

注意:用反渗透去离子 (RODI) 水或等效净化水制备溶液。

  1. 洗涤缓冲液: Tris Buffered Saline with Tween® 20 (TBST-10X) (#9997)
  2. 洗脱缓冲液:要制备 100 ml,可将 1M Tris-HCl pH 6.8 的 6.25 ml 、20% SDS 的 10 ml 和 700 μl β-巯基乙醇混合。使用去离子化 H20 补足至 100 ml。仅在使用前制备新鲜的缓冲液。

B. 实验步骤

  1. 胶片下曝光后,将膜置于 TBST 中清洗四次,每次 5 分钟。在膜未干燥的情况下才可获得最佳结果。
  2. 在 50°C 下,在膜再生液中将膜孵育 30 分钟,同时轻轻晃动。
  3. 在 TBST 中将膜清洗六次,每次 5 分钟。
  4. (可选)为了确保已清除原始信号,用 5 ml TBST 将膜清洗两次,每次 10 分钟。将膜与 LumiGLO® 在室温下孵育 1 分钟,同时轻轻搅动。将膜上多余的显影液沥干。切勿令膜干燥。包在塑料包裹膜中并曝光于 X 射线胶片。
  5. 再次在 TBST 中将膜清洗四次,每次 5 分钟。
  6. 膜现在可以再次使用了。根据免疫印迹分析实验步骤中的“膜封闭和抗体孵育”步骤开始检测。

发布​于 2005 年 6 月 

修订于 2016 年 10 月

实验步骤编号:10

天然蛋白质免疫沉淀法

本实验步骤适用于天然蛋白质免疫沉淀法,进行蛋白质免疫印迹分析或激酶活动分析。

A. 溶液和试剂

注意:使用反渗透去离子水 (RODI) 或同等级别的水制备溶液。

  1. 20 X 磷酸盐缓冲液 (PBS):(#9808) 要制备 1 L 1X PBS,将 50 ml 20X PBS 添加至 950 ml dH2O 中并混合。
  2. 10X 细胞裂解缓冲液:(#9803) 要制备 10 ml 的 1X 细胞裂解缓冲液,将 1 ml 细胞裂解缓冲液添加至 9 ml dH2O,并混合。

    注意:使用前,请立即添加 1 mM PMSF (#8553)。

  3. 3X SDS上样缓冲液:Blue Loading Pack (#7722) 或Red Loading Pack (#7723) 通过添加 1/10 体积的 30X DTT 至 1 体积的 3X SDS 上样缓冲液,制备新鲜的 3X 还原性上样缓冲液。
  4. Protein A Magnetic Beads:将蛋白 A (#8687) 用于兔 IgG 免疫沉淀法。
  5. 6-Tube Magnetic Separation Rack:(#7017)。
  6. 10X 激酶缓冲液(用于激酶试验):(#9802) 要制备 1 ml 的 1X 激酶缓冲液,将100 µl 10X 激酶缓冲液添加至 900 µl dH2O 中并混合。
  7. ATP (10 mM)(用于激酶试验):(#9804) 要制备 0.5 ml 的 ATP (200 µM),将10 µl ATP (10 mM) 添加至 490 µl 1X 激酶缓冲液中。

B. 制备细胞裂解物

  1. 吸干培养基。添加含有调节因子的新鲜培养基,使其对细胞进行处理一段时间。
  2. 在非变性条件下收集细胞,去除培养基后用冰预冷的 1X PBS 洗涤细胞一次。
  3. 去除 PBS 并在每个细胞板上 (10 cm) 加入 0.5 ml 冰预冷的 1X 细胞裂解缓冲液,并在冰上孵育至少 5 分钟。
  4. 从板上刮下细胞,把提取物转移至微量离心管。置于冰上。
  5. 在冰上进行 3 次超声破碎,每次 5 秒。
  6. 在 4°C,在 14,000 x g 条件下,微量离心 10 分钟,将上清转移到新管中。上清液即为细胞裂解物。如有必要,裂解物可保存在 –80°C。

C. 免疫沉淀法

细胞裂解物预澄清(可选)

  1. 涡旋振荡,以混合磁珠。
  2. 添加 10-30 µl 的 50% 蛋白 A 磁珠混悬液至 200 µl 细胞裂解物中 (1 mg/ml)。
  3. 在 4°C 下,旋转孵育 30-60 分钟。
  4. 使用磁性分离架将磁珠沉淀小球。将上清转移到新管中。
  5. 继续以下的免疫沉淀法。

免疫沉淀

  1. 将一抗(按产品说明书中推荐的合适稀释比例配制)加入到 200 µl 细胞裂解物中,浓度取 1 mg/ml。在 4°C 下,旋转孵育过夜。
  2. 添加 Protein A Magnetic Beads(10-30 µl 的 50% 磁珠混悬液)。在 4°C 下,旋转孵育 10-30 分钟。
  3. 使用磁性分离架将磁珠沉淀小球。用 500 µl 的 1X 细胞裂解缓冲液,洗涤沉淀物五次。洗涤间期,保持样品于冰上。
  4. 继续使用免疫印迹法或激酶活动进行分析(D 部分)。

D. 样品分析

继续下述其中一项的具体步骤。

用蛋白免疫印迹法进行分析

  1. 用 20 µl 3X SDS 样品缓冲液重悬沉淀物。涡旋振荡,然后在 14,000 x g 下瞬时离心 30 秒。
  2. 将样品加热至 95–100°C 并持续 2-5 分钟,然后在 14,000 x g 下瞬时离心 1 分钟。
  3. 对于 SDS-PAGE,可将样品 (15-30 µl) 上样至 4-20% 凝胶上。
  4. 用蛋白质印迹法分析样品(请参阅蛋白质免疫印迹法实验步骤)。

注意:为了最大限度减少变性 IgG 重链产生的遮盖作用 (~50 kDa),我们建议使用 Mouse Anti-Rabbit IgG (Light-Chain Specific) (L57A3) mAb (#3677) 或 Mouse Anti-Rabbit IgG (Conformation Specific) (L27A9) mAb (#3678)(或 HRP conjugate #5127)。为了最大限度减少变性 IgG 轻链产生的遮盖作用 (~25 kDa),我们建议使用 Mouse Anti-Rabbit IgG (Conformation Specific) (L27A9) mAb (#3678)(或 HRP conjugate #5127)。

用激酶活性测定法进行分析

  1. 用 500 µl 1X 激酶缓冲液洗涤沉淀物两次。置于冰上。
  2. 在 40 µl 1X 激酶缓冲液中悬浮沉淀物,并补充 200 µM ATP 和适当的底物。
  3. 30°C 条件下孵育 30 分钟。
  4. 用 20 µl 3X SDS 样品缓冲液终止反应。涡旋振荡,然后再微量离心 30 秒。
  5. 将含有磷酸化底物的上清转移到另一管中。
  6. 将样品加热至 95–100°C 并持续 2-5 分钟,然后在 14,000 x g 下瞬时离心 1 分钟。
  7. 将样品上样 (15-30 µl) 至 SDS-PAGE (4-20%) 上。

发布​于 2008 年 12 月 

修订于 2013 年 11 月

实验步骤编号:410

产品使用信息

应用 稀释度
蛋白质印迹法 1:1000
免疫沉淀 1:200

存储:保存在 10 mM HEPES 钠盐中 (pH 7.5),含150 mM 氯化钠、100 µg/ml BSA、50% 甘油和低于 0.02% 的叠氮化钠。存储温度为 -20℃。请不要分装抗体。

特异性/敏感性

β-Arrestin 1 (D8O3J) Rabbit mAb 可识别总 β-抑制蛋白 1 的内源水平。这种抗体不与 β-抑制蛋白 2 发生交叉反应。


物种反应性:人、小鼠、大鼠、猴

来源/纯化

通过采用与人 β-抑制蛋白 1 蛋白的羧基末端附近的残基相对应的合成肽对动物进行免疫接种来产生单克隆抗体。

Arrestin 蛋白是 G 蛋白偶联受体 (GPCR) 信号转导的负调节因子。结合同源配体可刺激 GPCR 的磷酸化,随后抑制蛋白可结合至磷酸化的 GPCR 上,最后受体会内化,GPCR 信号转导脱敏 (1)。目前已经发现了四种不同的哺乳动物抑制蛋白。抑制蛋白1(也被称为 S-arrestin)和抑制蛋白4 (X-arrestin) 分别存在于视网膜圆柱细胞和视锥细胞中。Arrestin 2(也称为 β-arrestin 1)和 arrestin 3(β 抑制蛋白 2) 广泛表达,可与多数 GPCR 结合 (2)。作为接合体和骨架蛋白的 β-arrestin 在其他过程中起重要作用,如在 Erk 激活通路中募集 c-Src 家族蛋白至 GPCR (3,4)。β-arrestin 还在一些受体酪氨酸激酶信号通路中起作用 (5-8)。其他证据表明,β-arrestin 能转移到细胞核内,并通过结合到转录辅助因子上而调节转录 (9,10)。


一项研究已经证实,非可视 β-抑制蛋白对糖皮质激素信号转导产生响应,在家族成员间观察到不同的响应。具体而言,β-抑制蛋白 1 表达响应于糖皮质激素受体激活而增加,而 β-抑制蛋白 2 显示表达同步下降 (11)。


1.  Shenoy, S.K. and Lefkowitz, R.J. (2005) Sci STKE 2005, cm10.

2.  Lefkowitz, R.J. and Shenoy, S.K. (2005) Science 308, 512-7.

3.  Luttrell, L.M. et al. (1999) Science 283, 655-61.

4.  Luttrell, L.M. et al. (1999) Curr Opin Cell Biol 11, 177-83.

5.  Luttrell, L.M. and Lefkowitz, R.J. (2002) J Cell Sci 115, 455-65.

6.  Waters, C. et al. (2004) Semin Cell Dev Biol 15, 309-23.

7.  Lefkowitz, R.J. and Whalen, E.J. (2004) Curr Opin Cell Biol 16, 162-8.

8.  Waters, C.M. et al. (2005) Cell Signal 17, 263-77.

9.  Kang, J. et al. (2005) Cell 123, 833-47.

10.  Ma, L. and Pei, G. (2007) J Cell Sci 120, 213-8.

11.  Oakley, R.H. et al. (2012) Proc Natl Acad Sci U S A 109, 17591-6.


Entrez-Gene Id 408
Swiss-Prot Acc. P49407


仅供研究使用。不得用于诊断流程。
Cell Signaling Technology 是 Cell Signaling Technology, Inc. 的商标。

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β-Arrestin 1 (D8O3J) Rabbit mAb
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